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          DNA甲基轉移酶3B(DNMT3B)真核蛋白操作步驟

          日期:2023-07-12瀏覽:1606次

          DNA甲基轉移酶3B(DNMT3B)真核蛋白操作步驟:


          Ⅰ 實體組織蛋白的提取


          1. 在每1mL 冷Lysis Buffer加入10 μL磷酸酶抑制劑, 1 μL蛋白酶抑制劑和 5μL 100mM PMSF,混勻。冰上保存數分鐘待用。


          2.  每100mg固體組織置于培養皿中,剪碎成3mm×3mm左右的小塊,加入0.5~1 mL冷 Lysis Buffer,玻璃勻漿器上下手動勻漿15次,注意低溫操作;


          3. 取組織勻漿液轉移到1.5mL預冷的離心管,離心10000轉/分,4℃離心5 min;


          4. 取上清轉移至新的預冷的離心管中,即為全蛋白提取物,蛋白定量(Bradford法、BCA法);


          5. 分裝保存于-70℃,避免反復凍融。


          Ⅱ 培養細胞蛋白提取


          1. 貼壁培養的細胞,吸去培養基后,加入10mL/150mm培養板的冷PBS洗兩次,每次振搖數次以盡量去除培養液;


          2. 懸浮培養的細胞或用細胞刮子刮下的貼壁細胞,將細胞及培養液移至離心管中, 1000轉/分離心10 min,再用10mL/150mm培養板的冷PBS,1000轉/分離心5 min洗兩次;


          3. 在每 1mL冷 Lysis Buffer加入10μL磷酸酶抑制劑, 1μL蛋白酶抑制劑和5μL 100mM PMSF,混勻。冰上保存數分鐘待用。


          4. 細胞洗滌后,轉至新的預冷的離心管中,加入上述配制好的冷Lysis Buffer,加入量如下表所示:


          細胞數量


          Lysis Buffer加入量


          107個


          0.5 mL~1 mL


          5×106個


          0.2 mL~0.5 mL


          5.置于4℃搖床平臺上,溫和振蕩15 min;


          6. 14,000rpm,4℃離心15min,取上清為全蛋白提取物, 蛋白定量(Bradford法、BCA法);


          7. 分裝保存于-70℃,避免反復凍融

          DNA堿性膠上樣液(1.5 mL)

          DNA堿性膠上樣液(10 mL)

          DNA尿素-PAGE上樣液(1.5 mL)

          DNA尿素-PAGE上樣液(10 mL)

          DNA上樣液(紅),6×(非甘油)(見關聯產品)

          DNA上樣液(藍),6×(非甘油)(見關聯產品)

          DNA上樣液,6×(紅)

          DNA上樣液,6×(藍)

          miRNA尿素-PAGE上樣液(1.5 mL)

          miRNA尿素-PAGE上樣液(10 mL)

          三合一RNA上樣液(A型)

          三合一RNA上樣液(B型)

          核酸染料

          SYBR Green Ⅱ核酸染料

          超快核酸銀染試劑盒

          電泳級SYBR Green I

          電泳級耐熱型SYBR染料

          綠如藍核酸染料(UV)(0.5 mL)

          綠如藍核酸染料(UV)(1.5 mL)

          綠如藍核酸染料(可見光型)

          溴化乙錠干粉

          溴化乙錠清除劑(EB清除劑)

          溴化乙錠溶液(1.5 mL)


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